sujet des examens svi s5 FSJ v17-18

université chouaib doukkali el jadida - UCD
faculté des sciences El Jadida - FSJ

sujet des examens (non corrigés) svi5 v2017-2018


  • Physiologie des Grandes fonctions
  • Croissance et développement des plantes
  • Ecologie Générale II
  • Immunologie
  • Génétique II
  • Biologie moléculaire



Tome 5
Sujet des examens
Filière SVI 5
2017/2018


sujet des examens svi s5 FSJ v2017-2018




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Date de publication : 01/02/2019
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Semestre 5
M27: Physiologie des grandes fonctions (cours 27h ; TP 18h)
Objectif : Acquisition des connaissances de base de la physiologie animale et humaine
Cours :
Chapitre 1 : Physiologie Cardiovasculaire
I- L’appareil circulatoire : cœur et vaisseaux sanguins
II- L’appareil lymphatique et les organes lymphoïdes
III- La circulation
Chapitre 2 : Physiologie de la Respiration
I- L’appareil respiratoire
II- La respiration
Chapitre 3 : Digestion, Absorption et Métabolismes
I- L’appareil digestif
II- La digestion : buccale, stomacale et intestinale
III- L’absorption digestive
Chapitre 4 :Physiologie de la Reproduction
I- Activité génitale mâle et femelle
II- Fécondation
III- Gravidité
IV- Lactation
Chapitre 4 : Physiologie Rénale et Métabolisme Hydrominéral
Chapitre 6 : Physiologie des Système Sensoriels
Travaux dirigés : 3h
La thermorégulation
Travaux pratiques : 18h
La respiration, la circulation, la digestion, la reproduction
M28 : Croissance et développement des plantes (cours 30h ; TD 6h, TP 12h)
Cours : 30 H
PARTIE 1 : Les médiateurs du développement (15 H)
• Les phytohormones (Auxines, Gibbérellines, Cytokinines, Acide Abscissique,
Ethylène, Brassinostéroides … ) : Biosynthèse, dégradation, modes d’action et
rôles physiologiques dans la croissance et le développement des plantes.
• Le phytochrome
PARTIE 2 : Différenciation, organogenèse et morphogenèse (15 H)
• Germination et développement embryonnaire
• Développement végétatif
• Développement reproductif
• Interaction plantes facteurs externes (Photopériodisme, vernalisation,
mouvements des végétaux, rythmes circadiens…)
Travaux dirigés :6 H
Sortie sur le terrain : visite des conditionnements de semences et fruits aussi les firmes
de production et commercialisation des semences
Travaux pratiques : 12 H
• Effet des basses températures sur les tissus végétaux
• Action de l’auxine sur la rhizogénèse chez des plantules de Tournesol
• Effet des Gibbérellines sur l’allongement des entre-nœuds chez le petit pois
• Isolement et purification des protoplastes
• Culture in-vitro de fragments d’organes végétaux
• Etudes des déficiences minérales chez le petit pois
M29 : ECOLOGIE GENERALE II: Cours : 30 H ; TD : 3 H AP : 15 H
COURS :
Chapitre I –Notions sur la dynamique des populations (9 H)
1. Définition de la dynamique des populations
2. Compétitions intra et interspécifiques
3. Fluctuations des populations dans le milieu naturel et causes de fluctuation
Chapitre II - Caractéristiques des populations animales (9 H)
1. Répartition spatiale des individus
2. Densité des individus
3. Croissance des populations
4. Tables de survie et pyramides des âges
5. Sex ratio
Chapitre III Caractérisation des écosystèmes naturels (3 H)
1. Ecosystèmes aquatiques
2. Ecosystèmes terrestres
Chapitre III – PHYTOGEOGRAPHIE DU MAROC (9 H)
1. Diversité biogéographique du Maroc
2. Principaux types de végétations du Maroc (Forêts, steppes et zones humides)
3. Impacts sur les écosystèmes naturels du Maroc et leur biodiversité.
4. Conservation et valorisation de la biodiversité végétales du Maroc.
Travaux dirigés :
TD1 : Techniques d’échantillonnage
TD2 : Biodiversité désertique et zones humides
Travaux pratiques :
TP et/ou Sorties
M30 : Immunologie (cours 28 heures ; Travaux dirigés 8 heures ; Travaux pratiques 12 heures)
Objectif :
Faire acquérir à l’étudiant les bases fondamentales de la discipline et le préparer aux domaines
nécessitant de bonnes connaissances en immunologie.
I-INTRODUCTION
II- LES ANTIGENES
III- LES ACTEURS DU SYSTEME IMMUNITAIRE
A- Les organes du système immunitaire
B- Les cellules du système immunitaire
C- Notion de balance Th1/Th2
D- Les molécules du système immunitaire
1- Les anticorps
2- Le système du complément
3- Les cytokines
4- Les molécules de surface (complexe majeur d’histocompatibilité, récepteur des cellules T
« TCR », récepteur des cellules B « BCR » et CD « clusters de différenciation»)
IV- LES MODES DE REPONSE IMMUNITAIRE
A-Immunité non spécifique (naturelle)
I- Défenses au niveau de la peau et des muqueuses (anatomiques, biochimiques et
microbiologiques –flore bactérienne-)
II- Défenses systémiques
A- La réaction inflammatoire
B- Les défenses humorales et cellulaires (immunité nutritionnelle ; cytotoxicité du
complément ; interféron ; phagocytose ; cytotoxicité des cellules Natural Killers et
des cellules Killers …etc.)
B- Immunité spécifique (adaptative)
I- Immunité passive et immunité active
II- Les phases de la réponse immunitaire spécifique
a- Phase de reconnaissance et d’induction
b- Phase de coopération et de différenciation
c- Phase effectrice
- Voie humorale
- Voie cellulaire
- Arrêt et Contrôle de la réponse immunitaire
C- Système immunitaire en action
1- Immunité antibactérienne
2- Immunité antivirale
3- Immunité antiparasitaire
4- Immunité anti-tumorale
V- IMMUNOPATHOLOGIE
A- Les déficits immunitaires congénitaux et acquis.
B- Les allergies (hypersensibilités)
C- Les maladies auto-immunes
Travaux dirigés (8h.):
- Réaction antigène-anticorps
- Techniques immunologiques
Travaux pratiques (12 h.) :
- Technique d’immunodiffusion simple, double (Ouchterlony) et radiale.
- Dosage des antigènes.
- Localisation des organes lymphoïdes centraux et périphériques chez le rat ou la souris (thymus,
rate, ganglions, Plaques de Peyer). Mise en suspension et test de viabilité des cellules
immunitaires (thymocytes, macrophages péritonéaux …etc.).
M31 : Module de Génétique II (cours 28h ; TD : 12h ; TP : 8h)
Cours : (28H)
I. Génétique des populations (6H)
- Etude de la variabilité génétique
- loi de Hardy-Weinberg
- Mécanisme de l’évolution (sélection, migration, dérive génétique, mutation)
- Mode de croisement
- Notion d’un caractère quantitatif
II. Génétique humaine (6H)
Les maladies génétiques et maladies héréditaires
Hérédité extra chromosomique
Notion de cytogénétique : (Caryotype et aberration chromosomique de nombre et de
structure)
III. Génétique moléculaire (12H)
Bases moléculaires des mutations géniques
Les systèmes de réparation
Mécanismes de recombinaison homologue (Rec A dépendant et indépendant)
Les éléments génétiques mobiles : les transposons (structure, mécanisme et intérêt)
• Proposition de Travaux dirigés :
- Les TD sont soit des compléments du cours, soit des exercices ou encore sous
forme d’analyse d’article
• Proposition de travaux pratiques :
- Analyse de caryotype (1 séance)
- Ilustrer la recombinaison génétique. Transformation d’une bactérie RecA+ et une autre
Rec A- par un plasmide qui renferme des séquences homologues (par exemples des
répétitions) (2eme et 3eme Séance)
M32 : Module de Biologie Moléculaire S5 : (cours 27h ; TD : 12h ; TP : 9h)
Cours :
I. Initiation aux techniques usuelles de biologie moléculaire (7H)
- Méthodes d’étude des Acides nucléiques (extraction et purification)
- Séparation des acides nucléiques et électrophorèse
- Enzymes de restriction
- Vecteurs de clonage (plasmides)
- Marquage des acides nucléiques
- Amplification par PCR
II. Le Dogme Central
- La réplication
- La transcription
- La traduction
- Régulation génétique chez les bactéries (opéron lactose et opéron tryptophane)
• Proposition de Travaux dirigés :
- Techniques de séparation et d’analyse des acides nucléiques : ADN nucléaires et ARN, Plasmides
(Complément du cours).
- Analyse de séquences d’ADN pour déterminer les signaux importants (Promoteurs, Shine
D’Algarno, codon initiateurs, STOP, …) et déterminer le ou les ARN ainsi que la ou les protéines
synthétisées (déterminer leur taille, comparaison …). Il est aussi possible et intéressant de faire
des mutations et prédire leur(s) conséquence.
- Mutations de l’opéron lactose et leurs caractérisations via les diploïdes partiels (cis et trans
dominance)
• Proposition de travaux pratiques :
- Extraction d`ADN génomique à partir d`échantillons eucaryotes (pour simplification, chez les
végétaux) et visualisation de l`ADN. (1ere Séance).
- Extraction par lyse alcaline d’un plasmide à partir d’une bactérie et analyse par électrophorèse en
gel d’agarose. Sera combiné à la manipulation le même plasmide pur sous forme native et digéré
par une ou 2 enzymes de restriction. (2eme et 3eme Séance)
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